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Nthy-ori 3-1|Nthy-ori 3-1細(xì)胞 培養(yǎng)

發(fā)布時間:2016-12-21瀏覽:2448次

Nthy-ori 3-1|Nthy-ori 3-1細(xì)胞 培養(yǎng)

對于貼壁細(xì)胞,若細(xì)胞漂浮:培養(yǎng)瓶不開封,用75%酒精擦拭后平躺置于培養(yǎng)箱內(nèi)。次日觀察,如細(xì)胞大部分又貼回瓶底,表明細(xì)胞活力正常,剩余漂浮的細(xì)胞可以去掉,換成新鮮的培養(yǎng)基;如細(xì)胞還不貼壁,將細(xì)胞離心收集移到新的培養(yǎng)瓶中,原培養(yǎng)瓶加部分新鮮培養(yǎng)液繼續(xù)培養(yǎng),中間注意觀察,我們的技術(shù)人員會一直跟蹤指導(dǎo),直到問題解決。對于懸浮細(xì)胞:收到細(xì)胞后,將細(xì)胞全部離心,去掉舊的培養(yǎng)基,換成新鮮的培養(yǎng)基繼續(xù)培養(yǎng)。

特別注意:(如使用公共實(shí)驗室或者初次接觸,建議添加雙抗培養(yǎng))

(1)貼壁細(xì)胞收到當(dāng)天有少量或沒有飄忽的細(xì)胞可以當(dāng)天換液,因為路途顛簸造成大量飄忽的情況時,請將細(xì)胞換液后放置培養(yǎng)箱孵育到第二天再做消化傳代,請優(yōu)先選擇直徑6cm的培養(yǎng)皿進(jìn)行傳代培養(yǎng)

(2)收到細(xì)胞后請盡快更換為含10%血清的新鮮培養(yǎng)基,如因特殊情況需要繼續(xù)使用原瓶,請在原瓶培養(yǎng)基中額外添加10%的血清,(原瓶培養(yǎng)基的繼續(xù)使用時間zui長不宜超過72小時)

(3)如簽收時出現(xiàn)培養(yǎng)瓶壁破裂,漏液等情況請及時做好照片記錄并SUER技術(shù)人員

細(xì)胞接收后的操作流程與注意事項:

1)貼壁細(xì)胞生長緩慢;適當(dāng)提高血清濃度(zui高不能超過20%),或可根據(jù)該細(xì)胞生長特性生長密度,考慮胰酶消化后,轉(zhuǎn)移到新的培養(yǎng)瓶繼續(xù)培養(yǎng)

2)如果細(xì)胞為貼壁細(xì)胞,而收到時呈懸浮或者部分懸浮的狀態(tài),請將懸浮的細(xì)胞即時離心,加15%血清的*培養(yǎng)基到新的培養(yǎng)皿/瓶繼續(xù)培養(yǎng)3天;同時原培養(yǎng)瓶中剩下的貼壁細(xì)胞更換為15%血清的*培養(yǎng)基培養(yǎng)3天。3天后若原瓶或者新瓶中的細(xì)胞都沒有出現(xiàn)增值而是繼續(xù)脫落死亡,請及時實(shí)驗室技術(shù)人員會跟進(jìn)解決

3)生長不均:貼壁細(xì)胞若出現(xiàn)分布不均,成島狀生長,可將細(xì)胞進(jìn)行消化,重懸打散細(xì)胞,加入新鮮培養(yǎng)基進(jìn)行培養(yǎng)

細(xì)胞常規(guī)培養(yǎng)傳代流程(請嚴(yán)格遵照無菌操作)

(1)吸出原培養(yǎng)瓶中的培養(yǎng)基,PBS緩沖液潤洗細(xì)胞兩次,加2-3ml 0.25%胰酶進(jìn)行消化細(xì)胞(注意把握消化時間,通常控制在1-2min)

(2)注意培養(yǎng)基PH值變化情況,定期換液(每周2-3次),待細(xì)胞密度達(dá)到80%以后重復(fù)1項操作或者凍存

(3)取部分細(xì)胞懸液轉(zhuǎn)移到新的培養(yǎng)皿/瓶中,添加適當(dāng)?shù)?培養(yǎng)基,把細(xì)胞懸液打勻,于培養(yǎng)箱中培養(yǎng)

(4)鏡下觀察消化情況,在HS505.T人淋巴結(jié)成纖維樣細(xì)胞生長特性邊緣縮小,貼壁松動時(不建議消化到細(xì)胞漂浮)去掉胰酶,加6-8ml*培養(yǎng)基,輕輕吹打細(xì)胞層,盡量把細(xì)胞層吹落,吹散。

請各位老師以隨貨說明為主

 

MTT點(diǎn)板時一定要將細(xì)胞消化成單個細(xì)胞,而且一定要混勻,用排槍,否則,MTT的SD會狂大!

2、點(diǎn)板布局

其實(shí)這一點(diǎn)很多人不懈一顧。如果你的細(xì)胞要養(yǎng)48 h或更長,建議不要吝嗇96-孔板的四周邊孔,這32個邊孔不能使用,建議加入滅菌PBS以飽和中間64個孔的水分。因為細(xì)胞培養(yǎng)過程中,邊孔的水分蒸發(fā)很快,培養(yǎng)液及里面的藥物會出現(xiàn)濃縮現(xiàn)象,細(xì)胞的狀況就復(fù)雜了,有些人稱之為%26ldquo;邊緣效應(yīng)%26rdquo;這些孔的SD也會狂大,既然如此,不如不用。

3、加MTT

如果確認(rèn)你考察的藥物沒有氧化還原性,你可以直接加入MTT溶液(總體積的1/10),如果你沒有把握,建議在加MTT前換一次液;如果你肯定考察的藥物的氧化還原性很強(qiáng),比如谷胱甘肽、Vit E、VitC,那建議你用PBS將細(xì)胞洗洗,否則這些藥物會將MTT還原成棕褐色沉淀,這種效果可能是你不需要的。

4、加入MTT后的反應(yīng)

時間為3-4h,此時棄去各孔中的液體在加入200微升的DMSO。為了將沉淀溶解*,盡可能將水棄除干凈,加入DMSO后在搖床上震搖10min。提醒:如果你的細(xì)胞貼壁不好,此時的沉淀在棄去液體時易丟失,因此貼壁不好的細(xì)胞在點(diǎn)板時記得將96孔板用多聚賴氨酸處理處理,要么在棄液體時先用甩板機(jī)離心,再輕輕棄去液體。關(guān)于DMSO的量,每孔的體積有點(diǎn)兒差異不干擾檢測,只要能將沉淀*溶解就行了。至于DMSO的體積差異不同為什么不影響檢測值已經(jīng)被數(shù)學(xué)證明了,在此我不多說,如果有人不明白我再證明給他看。當(dāng)然為了養(yǎng)成良好的實(shí)驗習(xí)慣,DMSO的體積還是一致的好。

5、檢測MTT

還原的MTT在460-630均有較好的吸收,如果你的酶標(biāo)儀是濾光片,可以選470 nm左右或630 nm左右的濾光片,如果酶標(biāo)儀有單波長,你可以在檢測前掃描一下吸收譜,選用zui大細(xì)說波長檢測就是了,zui大波長,大概在550nm附近,必要時加一個參比波長以扣除非特異性吸收。

6、吸收值分析

在理想的MTT實(shí)驗中,如果是細(xì)胞抑制實(shí)驗,不加藥物處理組的吸收值應(yīng)該在0.8-1.2左右,太小檢測誤差占的比例較多,太大吸收值可能已經(jīng)超出線性范圍。這個原理在朗伯-比爾定律中有解釋。

7、建議

如果你覺得MTT中出現(xiàn)的問題不好解決,那么建議你做CCK-8實(shí)驗,原理與MTT相似,但操作上簡化些,當(dāng)然,費(fèi)用也稍微高一些。

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